可溶性糖含量的測定方法有哪些，定性測定糖的方法都有哪些

1樓：生活類答題小能手

1、苯酚法

苯酚法可用於甲基化的糖、戊糖和多聚糖的測定，方法簡單，靈敏度高，基本不受蛋白質存在的影響，並且產生的顏色穩定160min以上。

2、蒽酮比色法

乙個快速而簡便的定糖方法。蒽酮可以與游離的己糖或多醣中的己醣基、戊糖基及己醣醛酸起反應，反應後溶液呈藍綠色，在620nm處有最大吸收。本法多用於測定糖原的含量，也可用於測定葡萄糖的含量。

擴充套件資料

1、苯酚法測定可溶性糖的原理是：糖在濃硫酸作用下，脫水生成的糠醛或羥甲基糠醛能與苯酚縮合成一種橙紅色化合物，在10～100ug範圍內其顏色深淺與糖的含量成正比，且在485nm波長下有最大吸收峰，故可用比色法在此波長下測定。

2、蒽酮比色法實驗原理：蒽酮可以與游離的已糖或多醣中的已醣基、戊糖基及已醣醛酸起反應，反應後溶液呈藍綠色，在620nm處有最大吸收。

2樓：長春北方化工灌裝裝置股份****

測定方法有以下幾種：

1.蒽酮法測定可溶性糖

2.苯酚法測定可溶性糖

3.3 ,5 –二硝基水楊酸比色法測定還原糖

4.斐林試劑比色法測定還原糖

斐林試劑比色法測定還原糖步驟

一、原理

植物組織中的可溶性糖可分為還原糖（主要是葡萄糖和果糖）和非還原糖（主要是蔗糖）兩類。還原糖具有醛基和酮基，在鹼性溶液中煮沸，能把斐林試劑中的 cu 2+ 還原成 cu + ，使藍色的斐林試劑脫色，脫色的程度與溶液中含糖量成正比，在 590 nm 波長下比色測定吸光度，查標準曲線，即可計算出所測樣品中還原糖的含量。本方法也可用於測定蔗糖及總糖含量。

二、實驗材料、試劑與儀器裝置

（一）實驗材料

新鮮植物樣品或烘乾粉碎過的植物樣品。

（二）試劑

1. 斐林試劑 a 液： 40 g cuso 4 · 5h 2 o 溶解於蒸餾水定容至 1000 ml 。

2. 斐林試劑 b 液： 200g 酒石酸鉀鈉（ knac 4 h 4 o 6 · 5h 2 o ）與 150g naoh 溶於蒸餾水中，並定容至 1000 ml 。

a 、 b 兩液分別貯存，使用前等體積混合。

3. 0.1 ％葡萄糖標準液：取 80 ℃下烘至恒重的葡萄糖 0.1000 g ，加蒸餾水溶解，定容至 100 ml 。

4. 0.1mol/lnaoh 。

5. 甲基紅指示劑： 0.

1 g 甲基紅溶於 250 ml 60 ％乙醇中。 6. 10 ％ pb(ac) 2 。

7. 飽和 na 2 so 4 。

（三）儀器裝置

分光光度計，分析天平，離心機，水浴鍋，具塞刻度試管，刻度吸管，容量瓶，研缽。

三、實驗步驟

1 . 標準曲線的製作取 7 支試管，按表 24 – 4 分別加入各溶液。將以上各管混合後加塞，於沸水浴中加熱 15 min 。

取出後自來水冷卻， 1500 r/min 離心 15 min 。取上清液，用分光光度計在 590 nm 波長下比色，以蒸餾水作對照，讀取吸光度。用空白管的吸光度與不同濃度糖的各管的吸光度之差為橫座標，對應的糖含量為縱座標，繪製標準曲線。

2. 樣品中還原糖的提取取新鮮的植物樣品洗淨、擦乾、剪碎，稱取 3.00 g ，放入研缽中研磨至糊狀，用水洗入大試管中。

體積為 10 ～ 15 ml 時，加 2 ～ 3 滴甲基紅指示劑，如呈紅色，可用 0.1 mol/l 的 naoh 中和至微黃色。若用風乾樣品，可稱取乾粉 3.

00 g ，先在燒杯中用少量水濕潤，然後用水洗入 250 ml 容量瓶中，如顯酸性，可用上法中和。將大試管置於 80 ℃的恆溫水浴中保溫 30 min ，其間搖動數次，以便將還原糖充分提取出來。對含蛋白質較多的樣品，此間可加 10 ％ pb(ac) 2 ，除去蛋白質，至不再產生白色絮狀沉澱時，加飽和 na 2 so 4 除去多餘的鉛離子。

30 min 後取出冷卻，將提取液全部轉入 100 ml 容量瓶中。定容至刻度，搖勻後過濾待測。

3. 樣品測定吸取 6 ml 待測液，加 4 ml 斐林試劑，其他操作與標準曲線相同，在 590 nm 波長下讀取吸光度。以不含樣品的空白管的吸光度減去樣品管的吸光度，在標準曲線上查出糖含量。

3樓：高艾祈弘致

蒽酮比色法、銅還原碘量法、費林試劑法、原子吸收法、氣相色譜法、液相色譜-蒸發光散射法，及連續流動法

蒽酮比色法

糖在硫酸作用下生成糠醛，糠醛再與蒽酮作用形成綠色絡合物，顏色的深淺與糖含

量有關。在625

nm波長下的od值與糖含量成正比。由於蒽酮試劑與糖反應的呈色強

度隨時間變化，故必須在反應後立即在同一時間內比色。

銅還原碘量法

試劑中的cu2+與還原糖作用，生成氧化亞銅(cu2o)沉澱。加入h2so4後，氧化亞銅

溶解生成cu+,試劑中的kio3與ki在酸化的同是生成i2。

kio3+5ki+3h2so4→3k2so4+3h2o+3i2，然後cu+被i2氧化，2cu++i2

→2cu+

2i-溶液中剩餘的碘以澱粉為指示劑，用na2s2o3標準溶液滴定：na2s2o3+i2→

na2s2o6

+ 2nai

同時以水代替樣試液做空白滴定，將空白與樣品的滴定差值帶入由滴定標準系列糖液計算的回歸方程中，即可求得所求試樣中還原糖的含量。

費林試劑法

在沸熱條件下，用還原糖溶液滴定一定量的費林試劑時將費林試劑中的二價銅還原為一價銅,以亞甲基藍為指示劑,稍過量的還原糖立即使藍色的氧化型亞甲基藍還原為無色的還原型亞甲基藍。

原子吸收法

將樣液與過量的鹼性銅鹽反應，使產生沉澱，然後取上層清液用原子吸收分光光譜

儀測定剩餘銅含量，通過標準曲線計算水果蔬菜中可溶性糖含量

氣相色譜法

用糖醇衍生化成乙酸酯，用石英毛細管色譜柱對稻子、小麥麩皮樣品進行分析測定，得到樣品中可溶性nsp各組成單醣的色譜峰，並依據色譜圖提供的資料計算樣品中可溶性非澱粉各組成單醣的含量及其總含量

液相色譜-蒸發光散射法

不揮發樣品顆粒對光的散射程度與其質量成正比。

連續流動法

用鹽酸直接水解樣品中的可溶性糖，然後用連續流動分析儀測定樣品中可溶性糖的含量。

4樓：匿名使用者

可溶性總糖的測定

【實驗原理】

本實驗採用蒽酮比色法測定可溶性糖的含量.糖在硫酸作用下生成糠醛,糠醛再與蒽酮作用形成綠色絡合物,顏色的深淺與糖含量有關.在625 nm波長下的od值與糖含量成正比.

由於蒽酮試劑與糖反應的呈色強度隨時間變化,故必須在反應後立即在同一時間內比色.該實驗方法簡便,但沒有專一性,絕大部分的碳水化合物都能與蒽酮試劑反應,產生顏色.

【器材與試劑】

1. 實驗儀器分光光度計,恆溫水浴,電子天平,烘箱,刻度試管,漏斗

2. 實驗試劑活性炭,乙醇

葡萄糖標準液：稱取已在80℃烘箱中烘至恒重的葡萄糖100

mg,用80%乙醇配製成1000 ml溶液,即得每ml含糖為100

μg的標準液

蒽酮試劑：稱取1 g

蒽酮,溶解於1000 ml稀硫酸（將760 ml相對密度為1.84的濃硫酸用蒸餾水稀釋成1000

ml）溶液中,置於棕色瓶中,當日配置使用.

3. 實驗材料植物葉片或種子

【實驗步驟】

1. 可溶性糖的提取

植物葉片或種子在110℃烘箱烘15

min,然後調至70℃過夜.幹葉片磨碎後稱取50 mg樣品倒入10

ml刻度離心管內加入4 ml 80%乙醇,置於80℃水浴中不斷攪拌40

min,離心,收集上清液,其殘渣加2 ml 80%乙醇重複提2次,合併上清液.在上清液中加10

mg活性炭,80℃脫色30 min,80%乙醇定容至10

ml,過濾後取濾液測定.

2. 繪製標準曲線

取20 ml帶塞試管,編號,按下錶配置系列濃度的標準葡萄糖溶液.然後在每只試管中加入5

ml蒽酮試劑,混勻,蓋上塞子,在沸水浴中煮沸10

min（水浴重沸後計時）,取出,立即用水冷卻至室溫,在625nm波長下,分別測量各管的光密度值,用0號管調零.以光密度為縱座標,葡萄糖含量為橫座標,繪製標準曲線.

定性測定糖的方法都有哪些

5樓：du知道君