細胞凍存步驟是什麼,細胞凍存融化怎樣操作 為什麼

時間 2022-04-06 05:06:25

1樓:熱愛影視者

儀器1. 淨化工作台2. 離心機3. 恆溫水浴箱4. 冰箱(4℃、-20℃、-70℃)5. 倒置相差顯微鏡6. 培養箱7. 液氮冰箱

玻璃器皿1. 吸管(彎頭、直頭)2. 培養瓶3. 玻璃瓶(250ml、100ml)4. 廢液缸。

塑料器皿1. 吸頭2. 槍頭3. 膠塞4. 移液管(10ml)5. 15ml離心管6. 凍存管(1~2ml)。

其他物品1. 微量加樣槍2. 紅血球計數板3.

記號筆4. 醫用橡皮膏5. 移液槍(五)試劑1.

d-hanks液2. 小牛血清3. 培養液4.

雙抗(青黴素、鏈黴素)5. 胰蛋白酶(0.08%)6.

1nhcl7. 7.4%nahco38.

dmso(分析純)或無色新鮮甘油。

細胞凍存1. 配製含10%dmso或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養液;

2. 取對數生長期的細胞,用胰蛋白酶把單層生長的細胞消化下來,懸浮生長的細胞則直接將細胞移至15ml離心管中;

3. 離心1000rpm,5min;

4. 去除胰蛋白酶及舊的培養液,加入適量配製好的凍存培養液,用吸管輕輕吹打使細胞均勻,計數,調節凍存液中細胞的最終密度為5×106/ml~1×107/ml;

5. 將細胞分裝入凍存管中,每管1~1.5 ml;

6. 在凍存管上標明細胞的名稱,凍存時間及操作者;

7. 凍存:標準的凍存程式為降溫速率-1~-2℃/ min;當溫度達-25℃以下時,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃時,則可迅速浸入液氮中。

也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h ,然後放入-70℃冰箱中過夜,取出凍存管,移入液氮容器內。

2樓:天蠍的心馳神往

冷存管置於4℃10分鐘----20℃30分鐘----80℃16~18小時(或隔夜)---液氮槽vaporphase長期儲存。-20℃不可超過1h,以防止胞內冰晶過大,造成細胞大量死亡,亦可跳過此步驟直接放入-80℃冰箱中,惟存活率稍微降低一些。

3樓:北京索萊寶科技****

細胞凍存

1. 配製含10%dmso或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養液;

2. 取對數生長期的細胞,去除舊培養液,用pbs清洗。

3. 去除pbs,加入適量胰蛋白酶(覆蓋培養皿表面)把單層生長的細胞消化下來;

4. 離心1000rpm,5min;

5. 去除胰蛋白酶,加入適量配製好的凍存培養液,用吸管輕輕吹打使細胞均勻,計數,調節凍存液中細胞的最終密度為5×106/ml~1×107/ml;

6. 將細胞分裝入凍存管中,每管1~1.5 ml;

7. 在凍存管上標明細胞的名稱,凍存時間及操作者;

8. 凍存:標準的凍存程式為降溫速率-1~-2℃/ min;當溫度達-25℃以下時,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃時,則可迅速浸入液氮中。

也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h ,然後放入-70℃冰箱中過夜,取出凍存管,移入液氮容器內。

細胞凍存融化怎樣操作?為什麼?

4樓:隋小魯霽

細胞凍存融化的原則是緩凍速融

細胞凍存(慢)

1.預先配製凍存液:10 % dmso + 90%胎牛血清,4℃冰箱儲存預冷;

2.用胰酶對細胞進行消化:倒去培養瓶中的培養基或用槍小心吸去培養板中的培養基,pbs沖洗兩次,用胰酶消化細胞(盡可能溫和);

3.將預冷的凍存液懸浮細胞,用滴管輕輕吹打混勻.

4.在每支凍存管中加入1ml細胞液,密封後標記凍存細胞名稱和凍存日期.

5.凍存步驟的細緻直接關係到細胞復甦時的活力,如果有程式降溫器(放在-80℃冰箱過夜,放入液氮罐)最好;或者可以在4℃,2h;然後轉到-20℃,2h;-80℃,2h;放入液氮罐.

細胞凍存管融化(快)

1.將細胞凍存管取出,浸入37℃水浴鍋內,輕輕晃動,注意融化,當融得只剩乙個小冰塊時,將細胞插入冰中.

2.加入4℃預冷的培養基,用手指輕彈懸浮細胞團.

3.250g離心10min,去除上清液,再加入培養基,輕輕懸浮.

4.盡量將細胞中的dmso洗去,計數.

在細胞凍存過程中,所結的冰晶對細胞傷害較大,所以過程一定要慢,dmso能減少冰晶傷害.

在細胞復甦過程中,要快,以減少融化對細胞的傷害,其實還是冰晶的問題.dmso浸潤的細胞非常脆弱,所以可要盡快將dmso去除,一定要輕.

求助:貼壁細胞的凍存和復甦的具體步驟

5樓:魚骨頭愛游泳

凍存:吸去培養基-pbs洗-胰酶消化-加培養基終止消化-離心-凍存液重懸(可以直接放入-80過夜然後放入液氮)

復甦:用培養基直接吹打凍存管裡的細胞快速融化-離心-培養基重懸-移到培養瓶或皿中-晃勻-培養

細胞凍存的操作步驟

6樓:小海

(一)儀器

1. 淨化工作台

2. 離心機

3. 恆溫水浴箱

4. 冰箱(4℃、-20℃、-70℃)

5. 倒置相差顯微鏡

6. 培養箱

7. 液氮冰箱

(二)玻璃器皿

1. 吸管(彎頭、直頭)

2. 培養瓶

3. 玻璃瓶(250ml、100ml)

4. 廢液缸

(三)塑料器皿

1. 吸頭

2. 槍頭

3. 膠塞

4. 移液管(10ml)

5. 15ml離心管

6. 凍存管(1~2ml)

(四)其他物品

1. 微量加樣槍

2. 紅血球計數板

3. 記號筆

4. 醫用橡皮膏

5. 移液槍

(五)試劑

1. d-hanks液

2. 小牛血清

3. 培養液

4. 雙抗(青黴素、鏈黴素)

5. 胰蛋白酶(0.08%)

6. 1nhcl

7. 7.4%nahco3

8. dmso(分析純)或無色新鮮甘油 (一)細胞凍存

1. 配製含10%dmso或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養液;

2. 取對數生長期的細胞,用胰蛋白酶把單層生長的細胞消化下來,懸浮生長的細胞則直接將細胞移至15ml離心管中;

3. 離心1000rpm,5min;

4. 去除胰蛋白酶及舊的培養液,加入適量配製好的凍存培養液,用吸管輕輕吹打使細胞均勻,計數,調節凍存液中細胞的最終密度為5×106/ml~1×107/ml;

5. 將細胞分裝入凍存管中,每管1~1.5 ml;

6. 在凍存管上標明細胞的名稱,凍存時間及操作者;

7. 凍存:標準的凍存程式為降溫速率-1~-2℃/ min;當溫度達-25℃以下時,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃時,則可迅速浸入液氮中。

也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h ,然後放入-70℃冰箱中過夜,取出凍存管,移入液氮容器內。

(二) 細胞復甦

1. 從液氮容器中取出凍存管,直接浸入37℃溫水中,並不時搖動令其盡快融化。

2. 從37℃水浴中取出凍存管,開啟蓋子,用吸管吸出細胞懸液,加到離心管並滴加10倍以上培養液,混勻;

3. 離心, 1000rpm,5min;

4. 棄去上清液,加入含10%小牛血清培養液重懸細胞,計數,調整細胞密度,接種培養瓶,37℃培養箱靜置培養;

5. 次日更換一次培養液,繼續培養。 1.從增殖期到形成緻密的單層細胞以前的培養細胞都可以用於凍存,但最好為對數生長期細胞。在凍存前一天最好換一次培養液;

2.將凍存管放入液氮容器或從中取出時,要做好防護工作,以免凍傷;

3.凍存和復甦最好用新配製的培養液。

7樓:混f吃

1. 配製含10%dmso或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養液;

2. 取對數生長期的細胞,去除舊培養液,用pbs清洗。

3. 去除pbs,加入適量胰蛋白酶(覆蓋培養皿表面)把單層生長的細胞消化下來;

4. 離心1000rpm,5min;

5. 去除胰蛋白酶,加入適量配製好的凍存培養液,用吸管輕輕吹打使細胞均勻,計數,調節凍存液中細胞的最終密度為5×106/ml~1×107/ml;

6. 將細胞分裝入凍存管中,每管1~1.5 ml;

7. 在凍存管上標明細胞的名稱,凍存時間及操作者;

8. 凍存:標準的凍存程式為降溫速率-1~-2℃/ min;當溫度達-25℃以下時,可增至-5℃~-10℃/min;到-100℃時,則可迅速浸入液氮中。

也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h ,然後放入-70℃冰箱中過夜,取出凍存管,移入液氮容器內。

細胞凍存管融化

1.將細胞凍存管取出,浸入37℃水浴鍋內,輕輕晃動,注意融化,當融得只剩乙個小冰塊時,將細胞插入冰中。

2.加入4℃預冷的培養基,用手指輕彈懸浮細胞團。

3.250g離心10min,去除上清液,再加入培養基,輕輕懸浮。

4.盡量將細胞中的dmso洗去,計數。

在細胞凍存過程中,所結的冰晶對細胞傷害較大,所以過程一定要慢,dmso能減少冰晶傷害。在細胞復甦過程中,要快,以減少融化對細胞的傷害,其實還是冰晶的問題。dmso浸潤的細胞非常脆弱,所以可要盡快將dmso去除,一定要輕。

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